徠卡顯微鏡解決色差，因為透鏡的焦距與透鏡區(qū)的規(guī)范化電位及線圈電流有關。當電子柬本身的能量有離散或透鏡區(qū)靜電位有起伏時，都將導致規(guī)范化電位的改變。這種電位的變化，或者透鏡的激勵電流不穩(wěn).又都會引起焦距的變化。它們將使軸上物點受到不同的偏轉，zui終與軸相交在不同處。在理想像平面中傷點與軸有了橫向偏離，從而形成模糊因斑。這種偏離稱為中心色差。像平面或物平面中的色差模糊圓半徑分別為：為減小色差，在設計透鏡時應使c盡量小，因為色差系數(shù)c‘和極靴結構及透鏡的激勵情況有關。
 

　　有聚光鏡的顯微鏡則可將聚光鏡作上下移動使其亮度適中，另外也可以改變可變光闡的孔徑以達到適中9b亮度。如果光線太陽時，則可將聚光鏡作適當?shù)南蛏仙勺児怍[的孔徑作適當?shù)姆糯?。如果光線太強則可將聚光鏡作適當?shù)南陆?，可交光閏的孔徑作適當?shù)臏p小。假如在這種情況下還感到刺眼，那末可選用適當?shù)臑V光片放置在聚光鏡下的托架上。這柞就能獲得使你滿意的亮度。當然在調(diào)節(jié)聚光鏡的上下位置利可變光閱的孔徑大小以及選用適合的濾光片，那是要經(jīng)過一定時期的實踐而取得經(jīng)驗的。
 

　　徠卡顯微鏡一個非常重要的問題是在取材和分離細胞過程，冰凍干燥和樹脂包埋(FD)后冰凍超簿團片后，冰凍干燥后細跑各部位65元素成分含量中必須處理十分仔細，絕不能損傷待觀察分析的細胞。因為作x線微區(qū)分析不但步驟繁多，而且成本甚高，如果經(jīng)過長時間及多步驟的處理后，所分析的細胞是受損傷的細胞或死細胞，得出錯誤的結論是非常遺憾的。如經(jīng)過膠元酶處理分離出的心肌細胞有兩種形態(tài)，一種是長桿狀，另一種是圓形。后者是在細胞分離過程中受損傷的瀕死細胞。
 

　　可將肌纖維放在一特制的架上，使該肌纖維收縮達到某時相需要固定時，立即啟動噴咀，使液態(tài)丙烷向肌纖維噴射，使之淬冷固定。然后再將肌纖維連同架子取出投入液氮中。如果固定血細胞或分離的細胞，首先低速離心使細胞集中，將細胞轉移到一個導熱性能良好的銀質小管中、將該小管放入液態(tài)丙烷中獰冷固定。實驗室固定大鼠胰腺時，先將兩鋼塊用液氦(或液氮)預冷，用鉗夾住兩銅塊將其放在胰腺前后，使姨腺淬冷固定。組織或細胞淬冷固定后轉移到液氮中可長期保存。
 

　　除目前zui推崇的冰凍超薄切片法外，在這里再介紹一種科學家們用過的沉積技術。在進行分析前加入一種物質，使之與待分析的成份形成沉積物以固定它，然后分析該沉積物。例如，人們常用草酸鹽與焦銻酸鹽去沉積肌細胞中的ca。前者對胞漿中低濃度的ca敏感性不夠高；焦銻吱鹽的敏感性高些，可與腦漿中游離ca形成電子致密的沉積物，但焦銻酸鹽與鈉、錳、鋇、鐵也形成沉積物，特異性較差。標本制備過程類似于普通透射電鏡超薄切片標本的制備，不同之處在于固定前3%焦銻酸鉀固定6小時，在染色的肌肉超薄切片上，在每個肌節(jié)的A帶和2帶的中線可見黑色沉淀物、再用未染色的切片做X射線微區(qū)分析。曾用二氨基聯(lián)苯胺四鹽酸(DAB)去沉淀含血紅素的物質等等。這種組化的沉淀反應與x射線微區(qū)分橋聯(lián)合應用在不具備冰凍超薄切片條件的實驗室可考慮采用。根據(jù)待分析元素的峰高可做半定量。